Lehrinhalte
Struktur und Funktion von Antikörpermolekülen
(Primär-, Sekundär- und Tertiärstruktur, Domänenstruktur, Raumstruktur des Paratops).
Klassen und Subklassen der Ig-Moleküle. Schwerketten-Ak der Camelidae bzw. Knorpelfische. Monovalente Derivate = Nanobodies, VNARs.
Struktur, biologische Funktion, biologische Konzentration, pathogenetische Funktionen der Ig.
Struktur von Peptidepitopen der Zielmoleküle.
Methoden zur Isolierung von IgG aus Zellkulturmedien bzw. Antiseren (Chromatographieverfahren).
Eigenschaften von monoklonalen Antikörpern im Vergleich zu polyklonalen Immunreagenzien.
Reinigung von Antikörpern durch Affinitätssäulen.
Methoden zur Bestimmung der Ak-Affinität.
Funktion und Ablauf eines Western-Blots (Beispiel: HIV- Ak-Erkennung bzw BSE-Tests).
Aufbau und Ablauf eines Elisa (Beispiele: Screening-Test auf HIV-Antikörper, Hormontests).
Signalverstärkung in Western Blots, Elisas und in der Immunhistochemie durch Sekundärreagenzien.
Surface Plasmon Resonanz-Techniken und ihre Anwendungen.
Durchflußzytometrie mit Antikörpermarkierungen, Anwendungen in der Hämatologie.
Lateral-Flow-Technik als Schnelltests (Beispiel: CoV-2-Antigen-Test im Abstrich)
Peptidomanalyse mit der Massenspektrometrie.
Literatur
1) Abbas,A.K., Lichtman A.H., Pober, S. : Cellular and Molekular Immunology
Elsevier-Saunders, 10.Auflage, 2022
2) Greenfiel, E.A. (Ed.) : Using Antibodies , A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Lab Press, 2n ed. 2014.
3) Lottspeich,F. und Engels,J.W. (Hrsg
Bioanalytik, Springer Spektrum-Verlag, 3.Aufl. , 2012
4) Luttmann, W. u.a. : Der Experimentator Immunologie, Elsevier-Spektrum Akademischer Verlag, Heidelberg, 4.Aufl. , 2014
5) Müller-Esterl, W.: Biochemie, Springer Spektrum , Heidelberg, 3.Aufl., 2018
6) Raem, A.M. , Rauch, P. (Hrsg.): Immunoassays, Spektrum Akademischer Verlag, Heidelberg 2007
7) Rehm, H. Letzel, T.: Der Experimentator Proteinbiochemie/Proteomics. Springer Spektrum, Heidelberg, 7.Aufl. ,2016
Voraussetzungen
Vordiplom oder B.Sc. in Chemie, Biologie oder Molecular Engineering.
Erwartet werden theoretische Vorkenntnisse in Proteinchemie und in biochemischen Analysetechniken.
Erwarter werden auch Zeit und Interesse an der Lösung von Übungsfragen und - aufgaben im Anhang zu den einzelnen Vorlesungen.
Erwartete Teilnehmerzahl
25 - 50
Weitere Informationen
In Vorlesung 1 werde ich auf Vorlesungen mit verwandten Themen hinweisen.
Bei der Planung dieser Vorlesung gehen wir aktuell von der Form Präsenzvorlesung aus (evenuell mit Maskenpflicht).
Offizielle Kursbeschreibung
Ziel ist die Vermittlung von Grundlagen zum Verständnis der Antikörperstruktur und Funktion, die Entwicklung von Kompetenzfür den eigenen Einsatz von Ak und Ak-Derivaten in experimentellen Arbeiten , d.h. durch die analyytische Prüfung von kommerziell verfügbaren Produkten oder Immunreagenzien aus der Arbeitsgruppe,
Entwicklung von experimentellen Fähigkeiten zum eigenen Aufbau von Western Blots, Enzymimmunoassays oder Immuntechniken in der Durchfluzytometrie für Forschungsarbeiten.
Schaffen von Basiswissen über medizinisch eingesetzte Immuntests (Cytometrie von Immunzellen im Blut, Bestimmung von zirkulierenden Tumorzellen, Tumormarker-Analyse, HIV-Suchtests, CoV-2-Antigentests).
Einführung in die Grundlagen der Oberflächen-Plasmon-Technik in Suchtests für affine Biobinder,
Einführung in Methoden der Msssenspektrometrie zur Analyse von Proteingemischen.
Nachhaltigkeitsbezug der Veranstaltungsinhalte
Diskussion zum Potenzial von Immuntests in der Umweltanalytik.
Erörterung, wo Tierversuche durch andere Forschungsmehoden ersetzt werden können.
Online-Angebote
moodle
Struktur und Funktion von Antikörpermolekülen
(Primär-, Sekundär- und Tertiärstruktur, Domänenstruktur, Raumstruktur des Paratops).
Klassen und Subklassen der Ig-Moleküle. Schwerketten-Ak der Camelidae bzw. Knorpelfische. Monovalente Derivate = Nanobodies, VNARs.
Struktur, biologische Funktion, biologische Konzentration, pathogenetische Funktionen der Ig.
Struktur von Peptidepitopen der Zielmoleküle.
Methoden zur Isolierung von IgG aus Zellkulturmedien bzw. Antiseren (Chromatographieverfahren).
Eigenschaften von monoklonalen Antikörpern im Vergleich zu polyklonalen Immunreagenzien.
Reinigung von Antikörpern durch Affinitätssäulen.
Methoden zur Bestimmung der Ak-Affinität.
Funktion und Ablauf eines Western-Blots (Beispiel: HIV- Ak-Erkennung bzw BSE-Tests).
Aufbau und Ablauf eines Elisa (Beispiele: Screening-Test auf HIV-Antikörper, Hormontests).
Signalverstärkung in Western Blots, Elisas und in der Immunhistochemie durch Sekundärreagenzien.
Surface Plasmon Resonanz-Techniken und ihre Anwendungen.
Durchflußzytometrie mit Antikörpermarkierungen, Anwendungen in der Hämatologie.
Lateral-Flow-Technik als Schnelltests (Beispiel: CoV-2-Antigen-Test im Abstrich)
Peptidomanalyse mit der Massenspektrometrie.
Literatur
1) Abbas,A.K., Lichtman A.H., Pober, S. : Cellular and Molekular Immunology
Elsevier-Saunders, 10.Auflage, 2022
2) Greenfiel, E.A. (Ed.) : Using Antibodies , A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Lab Press, 2n ed. 2014.
3) Lottspeich,F. und Engels,J.W. (Hrsg
4) Luttmann, W. u.a. : Der Experimentator Immunologie, Elsevier-Spektrum Akademischer Verlag, Heidelberg, 4.Aufl. , 2014
5) Müller-Esterl, W.: Biochemie, Springer Spektrum , Heidelberg, 3.Aufl., 2018
6) Raem, A.M. , Rauch, P. (Hrsg.): Immunoassays, Spektrum Akademischer Verlag, Heidelberg 2007
7) Rehm, H. Letzel, T.: Der Experimentator Proteinbiochemie/Proteomics. Springer Spektrum, Heidelberg, 7.Aufl. ,2016
Voraussetzungen
Vordiplom oder B.Sc. in Chemie, Biologie oder Molecular Engineering.
Erwartet werden theoretische Vorkenntnisse in Proteinchemie und in biochemischen Analysetechniken.
Erwarter werden auch Zeit und Interesse an der Lösung von Übungsfragen und - aufgaben im Anhang zu den einzelnen Vorlesungen.
Erwartete Teilnehmerzahl
25 - 50
Weitere Informationen
In Vorlesung 1 werde ich auf Vorlesungen mit verwandten Themen hinweisen.
Bei der Planung dieser Vorlesung gehen wir aktuell von der Form Präsenzvorlesung aus (evenuell mit Maskenpflicht).
Offizielle Kursbeschreibung
Ziel ist die Vermittlung von Grundlagen zum Verständnis der Antikörperstruktur und Funktion, die Entwicklung von Kompetenzfür den eigenen Einsatz von Ak und Ak-Derivaten in experimentellen Arbeiten , d.h. durch die analyytische Prüfung von kommerziell verfügbaren Produkten oder Immunreagenzien aus der Arbeitsgruppe,
Entwicklung von experimentellen Fähigkeiten zum eigenen Aufbau von Western Blots, Enzymimmunoassays oder Immuntechniken in der Durchfluzytometrie für Forschungsarbeiten.
Schaffen von Basiswissen über medizinisch eingesetzte Immuntests (Cytometrie von Immunzellen im Blut, Bestimmung von zirkulierenden Tumorzellen, Tumormarker-Analyse, HIV-Suchtests, CoV-2-Antigentests).
Einführung in die Grundlagen der Oberflächen-Plasmon-Technik in Suchtests für affine Biobinder,
Einführung in Methoden der Msssenspektrometrie zur Analyse von Proteingemischen.
Nachhaltigkeitsbezug der Veranstaltungsinhalte
Diskussion zum Potenzial von Immuntests in der Umweltanalytik.
Erörterung, wo Tierversuche durch andere Forschungsmehoden ersetzt werden können.
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moodle
- Lehrende: Siegfried Neumann
Semester: WiSe 2023/24